hogyan fenyőtobozok nyitott

a skála két szövet megkülönböztethető szabad szemmel (ábra. 1a). A skála belső felülete sclerenchyma szálakból áll (8-12 6 mm átmérőjű, 150-200 mm hosszú), kábelekre emlékeztető kötegekbe csoportosítva. A skála külső felülete szkleridekből áll(20-30 Ft Átmérő, 80-120 Ft hosszúság).

egy merev fémvázra szereltük fel a mérleget, és szabályozott és változó relatív páratartalomnak tettük ki 23C-on egy zárt kamrában. Képelemzés segítségével megmértük a skála és a keret alja közötti szöget, valamint azt a távolságot, amelyet a skála csúcsa mozgott. A skála magas relatív páratartalom mellett a kúp közepe felé, alacsony relatív páratartalom mellett pedig a középponttól távolodik (ábra. 1b).

a szklerideket és a szálas sejteket mikromérlegben, ellenőrzött környezetben, relatív párásságnak tettük ki, és mértük a súly változását az idő múlásával. A két sejttípus között nem volt különbség. A kémiai elemzés2 azt mutatta, hogy minden sejttípus sejtfalában körülbelül 20% – os cellulózfrakció van. A többi lignin, hemicellulóz és pektin.

nagy különbségek vannak a szakítószilárdságban (rost 4,53 0,90 GPA; szklerid 0,86 0,05 GPA). A relatív páratartalom 1% – os változásával 23 Kb a rostok higroszkópos tágulási együtthatója (0.06 6,02) lényegesen alacsonyabb, mint a szkleridáké (0,20 0,04). A skála egyszerű kétrétegű szerkezetként történő modellezéséhez három paraméter ismerhető meg3: a két szövettípus merevsége, az egyes rétegek relatív méretei és azok higroszkópos tágulási együtthatója. A mérlegcsúcsok mozgása nem különbözik szignifikánsan a modell által előrejelzett mozgástól4 (átlag: 16,2 mm; előre jelzett, 20,6 mm; t=2,25; 8 d. f. ; nem szignifikáns).

nem lehetséges az egyes sejtek boncolása a skáláról, mivel az anyag rendkívül kemény. Kémiai kivonatolással eltávolítottuk a sejteket, de ez eltávolítja a vizet és a sejtfal néhány más összetevőjét. Ez befolyásolhatja a mikroszálak megfigyelt tekercselési szögét a sejt hosszú tengelyéhez viszonyítva (Ft), csakúgy, mint az a rendkívül száraz állapot, amely alatt a sejteket megfigyelték. A pásztázó elektronmikrográfok azt mutatják, hogy a szklerideknél lényegesen alacsonyabb a szálasejtekben a GmbH-k száma (ábra). 1c, d). Ezt megerősítette fény polarizációs microscopy5, ami azt jelezte, hogy θ 30° (±2° c) rost sejtek 74° (±5° c) sclerid sejtek.

a hajlítás mechanizmusa tehát úgy tűnik, hogy attól függ, hogy a cellulóz mikrofibrillák orientációja hogyan szabályozza a sejtek higroszkópos tágulását a két rétegben. A szkleridekben a mikrofibrillák a sejt körül vannak feltekerve (nagy tekercselési szög), lehetővé téve, hogy nedves állapotban megnyúljon. A szálak mikrofibrillái a cella mentén helyezkednek el (alacsony tekercselési szög), amely ellenáll a megnyúlásnak. Az ovuliferous skála tehát kétrétegként működik, hasonlóan a bimetál szalaghoz, de a hő helyett a páratartalomra reagál.